解毒通络调肝散对实验性糖尿病大鼠肝脏IRS-2表达的影响 糖尿病大鼠模型

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  【摘要】 目的 观察解毒通络调肝散对糖尿病胰岛素抵抗模型大鼠肝脏IRS 2的影响。方法 采用高脂饮食加链脲佐菌素诱导糖尿病胰岛素抵抗大鼠模型。将造模成功的大鼠随机分为模型组、二甲双胍组、吡咯列酮组和解毒通络调肝组。给药8周后进行各指标检测。结果 解毒通络调肝散能升高糖尿病胰岛素抵抗大鼠胰岛素敏感性指数,增加实验性糖尿病(DM)大鼠肝脏组织IRS 2的表达。结论 解毒通络调肝散对大鼠IR有显著的改善作用,其机制可能与增加实验性糖尿病(DM)大鼠肝组织中IRS 2表达有关。
  【关键词】 胰岛素抵抗;解毒通络调肝散;IRS 2
  
  胰岛素抵抗(IR)是2型糖尿病(T2DM)的重要发病机制之一,其具体的病理基础较为复杂。在临床中应用解毒通络调肝法可改善2型糖尿病患者IR状态,并且我们的前期实验研究工作也表明[1],解毒通络调肝散具有改善实验动物IR的作用,为进一步探讨其改善IR的作用机理,本实验观察了解毒通络调肝散对实验性DM大鼠肝组织单核细胞趋化蛋白 1(MCP 1)及胰岛素底物2(IRS 2)表达的影响,探讨二者与T2DM、IR之间的关系。
  1 材料与方法
  1.1 实验动物及饲料 清洁级8周龄雄性Wistar大鼠60只(体重150~170 g),购于吉林大学基础医学院,基础饲料(热量15 J/g)由吉林大学实验动物中心提供,高脂饲料由吉林大学实验动物中心新鲜配制:基础饲料63%,15%牛油,20%蔗糖,2%胆固醇,提供热量约20 J/g,其中脂肪提供热量占总热量30%。
  1.2 药物及试剂 解毒通络调肝散:长春中医药大学附属医院中医研究所提供;盐酸二甲双胍肠溶胶囊(君力达):北京圣永制药有限公司;盐酸吡格列酮片(瑞彤):江苏恒瑞医药股份有限公司。链脲佐菌素(STZ):美国Sigma公司;末端全血葡萄糖测试条:北京怡成生物电子技术有限公司;兔抗大鼠IRS 2的多克隆抗体,北京博奥森生物技术有限公司。
  1.3 动物分组及处理 60只大鼠按体重随机分为2组,正常对照组8只,DM模型制作组52只。正常对照组给予基础饲料,造模组给予高热量饲料。4周后,造模组腹腔注射1.2%STZ溶液30 mg/kg。于注射STZ1周后测定糖耐量。按照国际通用大鼠糖尿病诊断标准:血糖峰值>16.8 mmol/L和120 min血糖>11.1 mmol/L为糖尿病,具备上述一条为糖耐量减低[2]。取糖尿病或糖耐量减低造模组动物为实验对象。将造模成功大鼠48只按血糖峰值分层,随机分为模型组(n=12),中药组(n=12),二甲双胍组(n=12),吡格列酮组(n=12)。三个治疗组分别每日定时灌服解毒通络调肝散悬混液5 g/(kg•d)、二甲双胍水溶液0.5 g/(kg•d)、吡格列酮悬混液5 g/(kg•d),动物自由进食饮水,正常对照组喂普通饲料,其他组喂高热量饲料。治疗周期为8周。治疗结束时,纳入统计数据的动物数为:正常对照组8只,模型组8只,二甲双胍组9只,吡格列酮组10只,中药组10只。
  1.4 检测指标及方法
  1.4.1 生化指标的检测 血糖:怡成血糖仪检测;血清胰岛素:磁酶免分析仪I(美国Bio Rad)检测;胰岛素敏感指数ISI:Ln(1/空腹血糖×空腹胰岛素)。
  1.4.2 肝组织MCP 1、IRS 2蛋白表达测定 采用免疫组织化学SP法检测。一抗分别为兔抗大鼠MCP 1多抗(工作浓度:1:100)、兔抗大鼠IRS 2多抗(工作浓度1:200),二抗为山羊抗兔IgG。生物素标记来自抗兔的辣根过氧化物酶标记的链霉卵白素SP试剂盒。严格按试剂盒说明书进行。
  1.4.3 肝组织MCP 1、IRS 2蛋白免疫组化染色半定量评分标准 所有切片均由有经验的病理科医师盲法阅片作出诊断,每张切片观察5个×400视野。MCP 1以胞膜和胞浆核棕染为阳性,IRS 2以胞浆棕染为阳性。结果评定标准:着色程度:不着色者为0分,着色淡者为1分,中等着色为2分,着色深者为3分。着色细胞阳性范围:无着色0分,着色阳性细胞小于1/3为1分,着色阳性细胞1/3~1/2为2分,着色阳性细胞大于1/2为3分。将每张切片着色程度与着色细胞阳性范围得分各自相加为其最后计分。
  1.4.4 肝组织IRS 2 mRNA表达的测定 按Trizol试剂说明书操作。根据文献[3]合成IRS 2寡核苷酸(PCR)引物。IRS 2引物序列:上游 5’ GCA GTT CAG GTC GCC TCT GC 3’;
  下游 5’ GGA GCC ACA CCA CAT TCG CA 3’;GAPDH引物序列:上游 5’ ACC ACA GTC CAT GCC ATC AC3’;下游5’ TCC ACC ACC CTG TTG CTG TA3’;引物由北京鼎国生物技术发展公司合成。扩增条件为:94℃预变性2 min后进入如下循环:94℃→45s,55℃→45 s,72℃→45s,循环数为30个,最后于72℃延伸10 min。扩增的IRS 2长度为416 bp,GAPDH长度为450bp。用凝胶成像分析系统进行紫外光成像和图形分析,以GAPDH密度作为参考定量标准,数值以两者之吸光度(Int)×面积(Pix)比值表示,以对照组的比值作为标准1.0,计算IRS 2基因相对表达量。
  1.5 统计学处理 数据以(x±s)表示,采用SPSS 13.0软件进行方差分析检验。以P   DM模型组826.61±4.03��## 5.58±0.070��##
  二甲双胍组926.27±1.16��## 5.23±0.167��**##
  吡咯列酮组1022.76±2.95**��##▲▲ 5.20±0.186��**##
  中药组1022.86±2.39��**##▲▲ 5.05±0.206��**##△▲
  注:与DM模型组比较��**P0.05)。即二甲双胍组与中药组能提高IRS 2水平,吡格列酮组无提高IRS 2作用。见表3。
  图1 GAPHD
  1正常组 2DM模型组 3二甲双胍组 4吡格列酮组 5中药组
  图2 IRS-2mRNA表达
  1正常组 2DM模型组 3二甲双胍组 4吡格列酮组 5中药组
  
  3 讨论
  根据中医学理论,笔者曾提出关于2型糖尿病IR形成的毒损肝络的病因病机理论[4],并且探讨了2型糖尿病IR的肝内炎症发病机制与毒损肝络病机理论的相关性[5]。本实验通过探讨肝脏单核细胞趋化蛋白 1(MCP 1)表达对IRS 2的影响,观察解毒通络调肝散是否通过减少DM实验大鼠肝脏MCP 1表达,增加IRS 2的表达,进而改善IR,为DM的抗肝内炎症治疗提供实验依据。
  MCP 1是单核/巨噬细胞特异性的趋化因子,对单核/巨噬细胞有很强的趋化激活作用,促进炎性反应的发生。MCP 1可趋化单核/巨噬细胞浸润肝组织,在IR及T2DM慢性炎症发病机制中发挥重要作用。研究证实,多种炎性疾病的发生和发展都有与MCP 1密切相关[6]。在多种炎症性疾病中MCP 1的过度表达加重了病情,而抑制MCP 1的表达可减轻症状或阻断疾病的发展。胰岛素受体后的信号通路与炎症因子的信号传导存在交叉作用,炎症因子导致IR的关键部位是IRS。非特异性炎症所产生的炎症因子干扰胰岛素受体底物IRS/PI3K信号传导通路,是导致IR的主要分子机制。以往研究较多的是IRS 1,但随着基因剔除技术的发展,发现剔除IRS 1基因的纯合子动物(IRS 1 / )只发生IR而不导致DM,而IRS 2 / 动物具有2型DM的全部特征[7]。多数学者认为,IRS 2导致IR的作用更强烈[8]。IRS 2 IRS 2是胰岛素信号转导途径上游分子,在肝脏和胰腺β细胞大量表达,它的下调可能使胰岛素信号传导减少,导致胰岛素生物效应减低。
  本研究认为DM状态下肝脏MCP 1表达增加,是引起DM肝内炎症发病机制的一个重要因素,而肝脏IRS 2继发性减少可能是T2DM发病机制之一。本实验结果提示解毒通络调肝散具有上调肝内IRS 2蛋白及基因表达的作用,其机制有以下几种可能:解毒通络调肝散能够通过抑制肝脏MCP 1蛋白表达,减少了肝组织中单核巨噬细胞浸润,减轻肝内炎症病变;通过降低血糖,改善糖代谢,抑制非酶糖基化。目前在体内条件下,由于存在许多干扰因素,很难判断究竟哪种机制在解毒通络调肝散上调IRS 2蛋白及基因表达中起主要作用,是否还存在其他机制,有待体外实验研究中进一步确定。
  
  参考文献
  [1] 于淼,朴春丽,南征.解毒通络调肝散防治糖尿病大鼠胰岛素抵抗实验研究.山东中医杂志,2007,26(10):700 703.
  [2] Kawano K,Hirashima T,Mori S,et al.Spontaneous long term hyperglycemic rat with diabetic complications.Otsuka Long Evans Tokushima Fatty (OLETF) strain.Diabetes, 1992,41(11):1422 1428.
  [3] 周绍良,郝丽萍,陈轶英,等.长期酒精摄入对雄性大鼠胰岛素敏感性及肝脏IR、IRS 1、IRS 2 mRNA表达的影响.卫生研究,2006,35(3):294 296.
  [4] 于淼,朴春丽,南征.2型糖尿病胰岛素抵抗从毒损肝络论治的理论初探.上海中医药杂志,2007,41(3):18 20.
  [5] 于淼,朴春丽,南征,等.2型糖尿病胰岛素抵抗的肝内炎症发病机制与毒损肝络病机理论的相关性探讨.中国中西医结合杂志,2006,26(11):1032 1034.
  [6] 曾钧.单核细胞趋化蛋白 1与炎性疾病的研究现状.第一军医大学学报,2001,21(12):84 87.
  [7] Kadowaki T.Insights into insulin resistance and type 2 diabetes from knockout mouse models.Clin Invest,2000;106(4):459 465.
  [8] Kubota N,Tobe K,Terauchi Y,et al.Disruption of insulin receptor substrate 2 causes type 2 diabetes because of liver insulin resistance and lack of compensatory beta cellhyperplasia.Diabetes,2000;49(11):1880 1889.

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