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[摘要] 目的：采用酶消化法培养老龄SD大鼠血管平滑肌细胞，为血管疾病，特别是为动脉粥样硬化研究提供大量的原代平滑肌细胞。方法：无菌取老龄SD大鼠主动脉，0.2%Ⅱ型胶原酶消化分离细胞，采用自然纯化、差速贴壁纯化平滑肌细胞，免疫组化鉴定平滑肌细胞α肌动蛋白。结果：免疫组化染色显示细胞纯度在95%以上。结论：酶消化法分离获取SD大鼠平滑肌细胞方法简单，易掌握，采用本方法可稳定获得大量的平滑肌细胞供实验使用。
[关键词] 血管平滑肌细胞；酶消化法；免疫组化；α肌动蛋白
[中图分类号] R-33[文献标识码]A [文章编号]1674-4721（2011）2（b）-０15－０2
Culture and identification of aged Sprague-Dawley rat vascular smooth cells through enzyme digestion
WANG Mingyong, CHEN Feng, CHEN Zhuang
(Medical Experimentation Center, the Affiliated Hospital of Luzhou Medical College, Sichuan Province, Luzhou 646000, China)
[Abstract] Objective: To investigate the method of culture aged Sprague-Dawley(SD) rat vascular smooth cells (VSMCs) through enzyme digestion for supplies larges amounts of primary cells for vascular diseases. Methods: VSMCs were isolated from aged SD rat thoracic aortas by enzyme digestion and cultured with the technique of differential anchoring velocity. The expression of α-SMA was dected by immunocytochemistry. Results: Immunohischemistry revealed that the purity of VSMCs exceeded 95%. Conclusion: VSMCs can be gained easily by enzyme digestion in vitro. This method can supply larges amounts of VSMCs for scientific research and experimentation.
[Key words] Smooth muscle cells; Enzymatic isolation method; Immunohistochemical staining; α-actin
随着对心血管疾病，特别是动脉粥样硬化研究的进一步深入，提供稳定、大量的老龄大鼠血管平滑肌细胞是进行这些研究的基本保证。胚胎组织或幼龄动物的组织和器官分裂、增殖旺盛，老龄动物则相反，所以老年动物的组织细胞培养非常不易[1]，笔者采用了组织植块培养法、悬浮组织块培养法、酶消化分散细胞培养法对老龄SD大鼠主动脉平滑肌细胞分别进行原代培养[2-3]，相比其他方法，酶消化法分离老龄大鼠平滑肌细胞稳定且易掌握，笔者采用酶消化法成功稳定地分离、纯化培养老龄大鼠平滑肌细胞，现报道如下：
1 材料与方法
1.1 实验动物
健康的老龄SD大鼠，24月龄，体重（546±37） g，泸州医学院动物中心提供。
1.2 主要试剂及仪器
DMEM/F12培养基（GIBCO公司），0.25%胰酶（GIBCO公司），胎牛血清（杭州四季青生物公司），Ⅱ型胶原酶（GIBCO公司）,抗平滑肌肌动蛋白单克隆抗体（武汉博士德生物公司），免疫组化染色试剂盒（武汉博士德生物公司），Thermo二氧化碳培养箱（美国）。LICA倒置显微镜（德国）。
1.3 方法
1.3.1 动脉平滑肌细胞的分离和原代培养动物经颈动脉放血处死，在无菌条件下迅速取出主动脉，立即放入DMEM/F12液的平皿中漂洗2～3次，直到将凝血洗净，用弯头小镊轻柔地剥除外膜纤维脂肪层，纵行剪开血管，在DMEM/F12液中漂洗2次，将血管内膜面向上，铺于小木板上，用单面刀片自上而下刮1～2次，以除去内皮细胞，用眼科镊小心地撕下中膜内、中层，置于10 ml试管壁上，用眼科剪将其剪至糊状，加入2～5 ml 0.2%Ⅱ型胶原酶液（用含20%胎牛血清的DMEM/F12培养基配制）将组织块混匀，置5%CO2，饱和湿度的37℃培养箱中消化12～18 h，待小块血管组织完全消化溶解后，离心（1 000转/分）10 min，弃上清液，细胞沉淀中加入新鲜配制的DMEM/F12培养基（含20%胎牛血清，青霉素100 U/ml和链霉素100 μg/ml，pH 7.2），轻轻吹打混匀，然后按一个SD大鼠胸主动脉消化分散获得的细胞接种在1瓶细胞培养瓶内（25 ml容积），入37℃，5%CO2，饱和湿度的37℃培养箱中静置培养1 h，使细胞悬液中黏附能力较强的成纤维细胞先行黏附，然后小心地吸出细胞悬液（切勿振荡，以免搅动先行贴壁的成纤维细胞）接种到另一相同规格的培养瓶中，入37℃，5%CO2，饱和湿度的37℃培养箱中静置培养72 h后，换新鲜培养液，以后根据细胞生长情况2～3 d换1次液。
1.3.2 传代培养细胞长成单层和多层交错的致密细胞层，即可传代。传代时吸尽原有培养液，加1 ml 0.25%胰蛋白酶消化30 s～1 min，镜下观察到细胞成片地收缩时，加入3 ml含20%胎牛血清的DMEM/F12完全培养基立即终止消化，用弯头滴管将细胞自瓶壁上吹下来，以1∶2分装接种，5 d后可再传代。
1.3.3 细胞的纯化①自然纯化：由于在组织取材时去除了绝大部分的血管内、外膜，酶消化所得的细胞绝大多数为平滑肌细胞，随着传代次数的增多，平滑肌细胞可排除其他细胞的生长而优势增殖。②差速黏附处理[4]：将细胞悬液接种到培养瓶内，水平放置，置37℃二氧化碳培养箱内培养30～60 min，使细胞悬液中黏附力较强的成纤维细胞先行黏附，收集未贴壁的细胞悬液接种到另一培养瓶中继续培养。
1.4 鉴定
1.4.1 形态学观察观察细胞的大小、形态、生长特点、排列方式。
1.4.2 免疫细胞化学染色将传代的细胞接种于放有盖玻片的6孔板中，当细胞爬片生长至80%融合时，用α肌动蛋白抗体进行免疫组化染色分析。
2 结果
2.1 细胞形态学观察
当细胞长满瓶底时，可见平滑肌细胞的典型生长特点：细胞呈梭型，平行生长，束状排列，密集和稀疏处相互交错呈现“峰谷”状，峰处多为多层细胞，谷处没有细胞或1～3层细胞，这易与成纤维细胞区别，后者表现为“同心圆”状的生长。
2.2 平滑肌免疫组化鉴定
α肌动蛋白免疫组化染色可见胞浆内含有与细胞长轴相平行的黄色颗粒，证实为平滑肌细胞，细胞纯度在95%以上。
3 讨论
随着动物组织细胞培养技术和培养基质量的不断提高，目前对于血管平滑肌细胞的体外分离培养有很多报道，但对老龄SD大鼠的血管平滑肌细胞的报道少见，由于老龄动物组织细胞较年轻的动物组织细胞不易培养，寻找一种稳定的对老龄SD大鼠的血管平滑肌细胞培养的方法是非常重要的，笔者经过多次预试验，包括组织植块培养法、悬浮组织块培养法、酶消化分散细胞原代培养法，发现植块培养法和悬浮组织块培养法成功率低，不易掌握，不能稳定地获得实验所需的细胞，即使成功，但耗时长，并且易产生成纤维细胞等杂质，0.2%Ⅱ型胶原酶消化分细胞原代培养法可稳定、大量的获得实验所需的细胞。这可能是因为老龄动物血管平滑肌细胞出现增龄变化，分离后休眠期长，进入分裂的细胞而不易在体外生长增殖，而且老龄动物动脉血管中膜、胞外基质增加，血管平滑肌细胞被增高的弹力膜和胶原纤维分隔，组织植块培养法中细胞爬出阻力增大，酶消化法可将胞外基质消化，细胞易游离出来。总之，成功的老龄SD大鼠血管平滑肌细胞培养需要重视以下几点：①快速、仔细、彻底剥离血管中膜层，以获得高纯度的平滑肌组织。②组织块应尽量剪碎，便于很好地消化，消化程度是以肉眼不见消化液中的组织块，而是均匀黏稠状的混悬液为宜，在相差显微镜下可见大小成团细胞和单个细胞，如果12～18 h都不能很好地消化组织块，应及时更换胶原酶。③高质量的Ⅱ型胶原酶和胎牛血清是成功的关键。④分离组织时动作一定要轻柔，避免对血管组织的过度损伤。⑤在开始培养的72 h内，必须绝对静置，以防刚贴壁的细胞重新漂浮而死亡。⑥传代时掌握好消化的时机已是成功的关键，当细胞变成不透亮并细胞间有间隙出现，即可终止消化，消化后以成片成团的细胞成活率为高。⑦细胞培养全过程中要求严格的无菌操作[5]。
本实验用0.2%Ⅱ型胶原酶（用含的20%胎牛血清DMEM/F12培养基配制）消化老龄SD大鼠主动脉平滑肌细胞，并综合运用自然纯化法、差速贴壁法纯化获得高纯度血管平滑肌细胞，经鉴定，第5代细胞纯度可达95%以上，本方法稳定易掌握，具有一定的推广价值，为心血管系统病研究提供稳定的细胞来源。
[参考文献]
[1]司徒镇强.细胞培养[M].2版.北京:世界图书出版社,2007.
[2]方正旭,王伶,刘东.关于动脉平滑肌细胞培养的几个问题[J].江西医学院学报,2002,42(5):157-158.
[3]Diluozzo G,Bhargava J,Poweell RJ.Vascular smooth muscle cell effect on endothelial cell endothelin-l production[J].J Vasc Surg,2000,3(4):781-789.
[4]薛庆善.体外培养的原理与技术[M].北京:科学出版社,2001.
[5]费雷谢尼,张静波,徐存拴(译).动物细胞培养-基本技术指南[M].4版.北京:科学出版社,2004:116-120.
（收稿日期：2010-12-15）
