胃癌细胞7901 [COX-2基因沉默对人胃癌细胞系SGC-7901裸鼠成瘤的影响]

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  [摘要]目的 研究COX-2基因沉默对人胃癌细胞系SGC-7901裸鼠成瘤的影响。方法构建靶向COX-2的短发夹状双链RNA(shRNA)的真核表达质粒转染人胃癌细胞系SGC-7901,采用RT-PCR和Western blot分别从mRNA和蛋白质水平检测抑制效果。15只裸鼠随机分为3组,每组5只,皮下接种胃癌细胞。抑制组:接种转染抑制质粒的胃癌细胞;正常对照组:接种未转染的胃癌细胞;阴性对照组:接种转染阴性对照质粒的胃癌细胞。接种4周后比较各组裸鼠皮下形成瘤体的大体和病理情况并计算抑瘤率。结果转染靶向COX-2的shRNA抑制质粒后细胞中COX-2的表达被明显抑制,抑制率为70.42%。正常对照组和阴性对照组所有裸鼠均有瘤体形成,平均瘤质量分别为(0.49±0.017)g和(0.49±0.013)g。抑制组仅2只有瘤体形成,平均瘤质量(0.05*0.003)g,与正常对照组相比差别有统计学意义(P2、相对湿度为90%的培养箱中培养。待细胞汇片基本铺满瓶底时传代。
  1.2.2 细胞转染。将人胃癌细胞系SGC-7901接种于六孔板中,每孔加入含10%胎牛血清的RPMI 1640培养基2ml。置二氧化碳培养箱中培养(37℃,5%CO2),隔日更换培养液。待细胞汇片至80%时,用无血清RPMI 1640培养基洗3遍。将质粒和阳离子脂质体按照每1μg质粒加入5μl脂质体的比例混合于无血清RPMI 1640培养基中,室温静置15min,然后均匀滴加入六孔板,每孔200μl。3h后更换为含血清培养基,48h后荧光显微镜下观察转染情况。
  1.2.3 抑制效果检测。采用RT-PCR和Western blot两种方法分别检测细胞中COX-2 mRNA和蛋白质含量。实验分3组,分别为转染质粒WBHI的细胞组、转染阴性对照质粒HK的细胞组和未转染细胞组。用常规RT-PCR法扩增各组细胞中的COX-2 mRNA,β-actin作为内参照。COX-2上游引物为5′-TCAAGTCCCTGAGCATCTAC-3′,下游引物为5’一CATrCCTACCACCAGCAACC-3′,产物为488bp。β-actin上游引物为5-GAAACTACCTrCAACTCCATC-3′,下游引物为5′-CGAGGCCAGGATGGAGCCGCC-3′,产物219bp。94℃变性,55℃退火,72℃延伸,共35个循环。用细胞裂解液提取以上各组细胞的总蛋白,加热变性后10%SDS-PAGE电泳分离,电转移至PVDF膜上,用含5%脱脂奶粉的Tris盐溶液封闭2h,加入COX-2羊抗人多克隆一抗(1:200),4℃孵育过夜。用含吐温-20的Tris盐溶液洗膜(3次,每次10min)后加入辣根过氧化物酶标记的兔抗羊二抗(1:2000),室温下孵育1h。化学发光法(ECL)检测条带。actin作为内参照。以上实验均重复超过3次。
  1.2.4 裸鼠成瘤实验。转染48h后收获细胞,制成细胞悬液,流式细胞仪(FAC Soa-BD,USA)分选纯化。冷PBS洗涤,0.4%台盼蓝染色,记数活细胞数;当活细胞比率>95%,调整细胞浓度至4×106个・m-1,按每只裸鼠0.2ml腹股沟皮下接种。15只裸鼠随机分为3组,分别接种转染WBHI质粒细胞(抑制组)、转染阴性对照质粒HK细胞(阴性对照组)和未转染细胞(正常对照组),每组5只。实验过程均在SPF屏障环境内进行。接种4周后,观察各组裸鼠成瘤情况,比较成瘤率。断颈处死裸鼠,从皮下完整剥离取出肿瘤组织,比较各组裸鼠瘤体的大小和瘤质量。按下列公式计算抑瘤率:抑瘤率(%):(正常对照组平均瘤质量一抑制组平均瘤质量)/正常对照组平均瘤质量×100%。将瘤组织切片,苏木精―伊红(HE)染色,光镜下观察病理形态。
  1.2.5 统计学处理,采用SPSS13.0统计软件,运用 Oneway-ANOVA方法进行单因素多组间差异的比较,运用t检验进行两组间比较。P0.05)(图3)。
  
  
  
  
  
  
  2.3 COX-2蛋白的抑制情况
  COX-2蛋白在SDS-PAGE凝胶电泳中表现为72kD和74kD两条条带(图4)。转染了WBHI质粒的细胞中COX-2蛋白的表达明显受到抑制,结果与RT-PCR结果一致。
  
  2.4裸鼠成瘤情况
  接种4周后正常对照组5只裸鼠均有瘤体形成,成瘤率100%,平均瘤质量(0.49±0.017)g,阴性对照组成瘤率也为100%,平均瘤质量(0.49±0.013)g,与正常对照组相比没有统计学差异(P=0.965)。抑制组只有2只裸鼠有瘤体形成,成瘤率仅为40%(2/5),平均瘤质量(0.05±0.003)g,与正常对照组相比有统计学差异(P

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