[蟾毒灵诱导人胰腺癌细胞凋亡及其对TGF-β1表达的影响]细胞凋亡的诱导因素

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  【摘要】 目的 研究蟾毒灵对裸鼠人胰腺癌的疗效及细胞凋亡的作用和机理。方法 建立裸鼠人胰腺癌模型,随机分为对照组(NS)、5-氟尿嘧啶组(5-Fu)、蟾毒灵低剂量组(Bu L)、蟾毒灵高剂量组(Bu H)。分别腹腔注射生理盐水 NS,20 ml/kg、5-Fu 24 mg/kg、Bu 1 mg/kg、Bu 1.5 mg/kg。用药后第7天处死,计算肿瘤生长抑制率;TUNEL 法检测瘤体凋亡指数;免疫组化S-P法检测P38、TGF-β1的表达。结果 治疗后与NS组相比,各组瘤体体积均显著缩小(P[1,2]。但其治疗胰腺癌尚未见报道,本文观察蟾毒灵对裸鼠人胰腺癌的治疗作用,并从蟾毒灵诱导人胰腺癌细胞凋亡及其对TGF-β1信号转导的影响探讨其治疗胰
  腺癌的机制。
  
  1 材料和方法
  
  1.1 实验动物
  BALB/C,裸鼠80只,4~5周龄,雌
  雄各半,于SPF级动物实验室内的超净生物层流架中恒温无菌饲养。
  1.2 主要药物
  5-氟尿嘧啶5-Fu注射液(批号:050908,上海旭东海普药业有限公司,�10 ml�∶�0.25 g)�、蟾毒灵购自美国Sigma公司,剂型为粉针剂,�10 mg/�支。
  1.3 主要仪器和试剂
  CO�2恒温培养箱,德国Heraeus Instruments公司;超净工作台,苏州净化仪器厂;倒置显微镜,日本Olympus公司;DMEM细胞培养基干粉,美国GIBCO公司;新生牛血清,500 ml,美国GIBCO公司;胰蛋白酶,美国Sigma公司。
  1.4 细胞株来源与培养
  人胰腺细胞株SW1 900,由上海中医药大学分子与细胞培养室提供,常规复苏传代培养。在37 ℃, 5% CO�2:饱和湿度条件下,培养于含10%灭活的小牛血清、RPMI 1 640培养液中。体外培养至对数生长期时,离心、磷酸盐缓冲液洗涤,配制成1×10�7个/ml。
  1.5 荷瘤小鼠模型的建立 ①细胞接种:取4~6周龄BALB/C 裸鼠5只,体质量(20±2)g,雌雄各半。常规接种裸鼠背部近右上肢皮肤,注入0.2 ml制备好的单细胞悬液,细胞数约为2×10�6。隔离鼠笼内SPF条件下,恒温恒湿饲养;②组织块接种:经过5~7 d的潜伏期,裸鼠皮下肿瘤生长至�1~1.2 cm�,将供瘤鼠脱颈椎处死。沿移植瘤包膜小心剥离皮下肿瘤组织。取肿瘤边缘的新鲜肿瘤组织,眼科剪剪成直径1 mm×1 mm×1 mm大小组织块,置于生理盐水中备用。在超净台用20 g套管针接种于裸小鼠背部皮下。受体裸小鼠继续饲养于层流柜中。待皮下肿瘤直径约0.5 cm,即可作为模型用。
  1.6 实验分组和给药
  荷瘤鼠随机分为4组:生理盐水(NS)组、化疗药(5-Fu)组、蟾毒灵低剂量(Bu L)组、蟾毒灵高剂量(Bu H )组,每组12只,以上各组均为腹腔注射,其中Bu H组1.5 mg/kg;Bu L组为1.0 mg/kg;5-Fu组为24 mg/kg; NS组给予生理盐水20 ml/kg,连续给药6 d,1次/d。
  1.7 观察指标及方法 肿瘤生长抑制率:每组取6只,于治疗后第7天处死,游标卡尺测量瘤体最长径(a)和最短径(b),按公式计算肿瘤体积(V)的大小,根据公式V=12ab�2计算并比较各组肿瘤生长率。肿瘤生长抑制率:肿瘤生长抑制率=(对照组平均瘤体积-用药组平均瘤体积)/对照组平均瘤体积×100% 。
  1.8 小鼠肿瘤凋亡检测 治疗后每组取6只小鼠的肿瘤标本以10%甲醛液固定,石蜡包埋,切片,采用TdT介导的dUTP缺口末端标记技术(Trminal deoxynucleotidyl transferase-mediated dUTP nick-end-labeling,TUNEL脱氧核糖核酸末端转移酶介导的缺口末端标记法)。光镜下观察切片的染色反应,结果判断标准[11]为避开坏死区以细胞核有明显棕黄色为阳性细胞。随机选10个高倍视野(×400),借助网格记数器,细胞数>1 000个以上,计算TUNEL阳性标记指数(TUNELlabeling index, TUNEL-LI),即凋亡指数。
  1.9 肿瘤组织中的TGF-β1检测方法
  采用免疫组织化学链霉菌抗生物素蛋白-1过氧化物酶(S-P)方法:石蜡切片脱蜡,柠檬酸盐煮沸热修复法进行抗原修复;加非免疫性动物血清50μl,室温孵育�10 min�。加一抗caspase-350 μl,4 ℃过夜。加通用型生物素标记羊抗兔IgG 50 μl, 37 ℃孵育�15 min�。加辣根过氧化物酶标记链亲和素50 μl, 37 ℃孵育�15 min�。加新鲜配置的DAB溶液100 μl,闭光显色3~�10 min�,显微镜下控制显色。自来水冲洗,苏木素复染。脱水,透明,中性树胶封固。每批染色均用已知阳性切片作阳性对照,用PBS液代替一抗作阴性对照。显微镜下观察,以细胞核或细胞浆呈棕黄(褐)色为阳性,阳性计数采用双盲法。染色判断标准:p38表达以胞核和(或)胞浆着色为阳性细胞。每张切片于高倍镜下(×400)任选10个视野,计数阳性细胞数(细胞数>1 000),阳性表达率=(表达阳性细胞数/总细胞数)×100% [3]。
  1.10 统计方法 用SPSS11.0 统计软件包进行统计学分析,各组数据以均数±标准差(x±s)表示。
  
  2 结果
  
  2.1 各组荷瘤裸鼠肿瘤生长变化
  治疗前各组瘤体体积差异无统计学意义(P>0.05 ),提示治疗前各组具有可比性。治疗后,各用药组与NS组相比瘤体体积明显缩小(P0.05 );Bu H组较其他各组瘤体体积明显缩小(P0.05);Bu H组与5-Fu组和Bu L组相比凋亡指数明显增高�(P[4]。蟾酥是重要的传统抗癌中药,临床用以治疗癌肿,至少有近千年历史。蟾酥具有显著的细胞毒性;在适当剂量内无免疫抑制作用及骨髓抑制作用,与放疗、化疗同用则有减毒增效的作用。
  转化生长因子(TGF)β家庭是一类属结构相关蛋白的异二聚体多肽,至少包括三种(TGF-β1~3),其中TGFβ1是人体内的主要形式。TGF-β1为多效能生长因子,有研究显示胰腺癌中TGF-β1的过表达可能与蛋白激酶Ca(PKCa)的膜转运有关,而PKCa的膜表达在多药性耐药中发挥重要作用,检测胰腺癌组织中TGF-β1及PKCa的表达可能有助于对胰腺癌的化疗效果作出评价[5]。故胰腺癌中TGF-β1的表达异常与胰腺癌的发生发展密切相关。TGF-β1是抑制上皮细胞生长的多肽家庭族中的一员,有丝分裂原诱导的发生凋亡的组织内,TGF-β1前体表达明显增加,外源性的TGF-β1可诱导培养的肝细胞发生凋亡TGF-β1可促进体外培养的肝癌细胞中的DNA降解,TGF-β1通过与靶细胞上的受体结合,引起凋亡的发生。已有的研究发现TGF-β1对胰腺癌细胞凋亡以及细胞周期的具有重要影响这些均提示TGF-β1在细胞凋亡中起作用[6-8]。
  本研究应用不同剂量蟾毒灵治疗人胰腺癌移植瘤裸鼠后,从治疗前后裸鼠人胰腺癌移植瘤生长变化来看,高剂量蟾毒灵组瘤体缩小最明显,而且明显优于单独化疗组和低剂量蟾毒灵组,提示蟾毒灵的抗癌作用与剂量成正相关。本研究中Bu组治疗后的凋亡指数明显升高,同时, 在Bu H组中TGF-β1表达明显低于其他各组, 提示蟾毒灵的抗癌作用与下调TGF-β1表达, 从而促进肿瘤的凋亡有关。根据本研究结果发现,蟾毒灵对人胰腺癌的抑制作用可能是通过抑制细胞增殖、诱导细胞凋亡来发挥作用 ,但是其诱导胰腺癌细胞凋亡的明确的信号转导,还需进一步进行深入的研究。
  
  参考文献
  1 Zhu ZT, Jin B, Liu YP,et al. Enhancement of all-trans retinoic acid-induced differentiation by bufalin in primary culture of acute promyelocytic leukemia cells Zhonghua Nei Ke Za Zhi,2006,45(4):314-317.
  2 Ye M, Qu G, Guo H, Guo D ,et al. Novel cytotoxic bufadienolides derived from bufalin by microbial hydroxylation and their structure-activity relationships.J Steroid Biochem Mol Biol,2004,91(1-2):87-98.
  3 Ehrlichova M, Koc M, Truksa J, et al.The effect of benzamide riboside on the VX2 model of liver cancer in rabbits. J Vasc Interv Radiol, 2005,16:1499-1504.
  4 赵建斌,崔勤,王文亮,等.蟾毒灵诱导人急性早幼粒细胞性白血病细胞凋亡的实验观察.解放军药学学报,2004,20(3):161-163.
  5 赵海华, 陈颖,李芳梅,等. TGF-β1及PKCa在胰腺癌中的表达及其相关性. 第二军医大学学报, 2005:106.
  6 Conrotto P, Yakymovych I, Yakymovych M, et al. Interactome of transforming growth factor-beta type I receptor (TbetaRI): inhibition of TGFbeta signaling by Epac1. J Proteome Res,2007,6(1):287-297.
  7 Zhang S, Ekman M, Thakur N, et al. TGF-β1-induced activation of ATM and p53 mediates apoptosis in a Smad7-dependent manner. Cell Cycle,2006,5(23):2787-2795.
  8 王春雷 , 黄志强 , 周宁新,等. TGF-β1对人肝癌细胞系凋亡的调控作用研究. 肿瘤防治研究,2004:9.
  
  “本文中所涉及到的图表、注解、公式等内容请以PDF格式阅读原文”。

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