非洲猪瘟病毒p72蛋白原核表达及多克隆抗体的制备

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曹云雷,高 飞,2,李国新,2,姜一峰,2,郑 浩,2,童 武,2,黄 剑,2,童光志,2

(1.中国农业科学院上海兽医研究所,上海 200241;
2.扬州大学 江苏省动物重要疫病与人兽共患病防控协同创新中心,扬州 225009)

非洲猪瘟(african swine fever, ASF)是由非洲猪瘟病毒(African swine fever virus, ASFV)引发的一种急性、热性的猪流行症[1]。特征是高烧(达40℃~42℃),出血,病程短以及高死亡率[2]。病毒的某些特性与虹彩病毒科及痘病毒科相似[3]。世界动物卫生组织(Office International Des Epizooties,OIE)已将ASF列为法定报告动物疫病,中国也将ASF归类为一类动物疫病[4]。2018年8月,中国首例ASF在沈阳被确诊,随后迅速传播[5]。疫情目前已蔓延至我国30多个省份和地区,防控形势异常严峻。

ASFV是非洲猪瘟病毒科(Asfarviridae)非洲猪瘟病毒属(Asfivirus)的唯一成员,也是唯一的虫媒DNA病毒[6]。ASFV电子显微镜检测结果显示,ASFV的形态为正二十面体,直径约260 nm[7]。病毒粒子结构较为复杂,由内到外分五层组成:含病毒基因组的类核(nucleoid)、内核心壳(coreshell)、内膜(innerenvelope)、衣壳(capsid)和外囊膜(outerenvelope)[8]。

ASFV的基因组能够编码多种蛋白质,包括细胞中病毒复制,生存和宿主中转移所必需的各种蛋白质和酶[9]。p72蛋白是由B646L基因编码,是ASFV的主要衣壳蛋白。作为后期蛋白质,p72蛋白质具有构象中和表位,它能诱导机体产生中和抗体[10],但其产生的抗体不足以有效地保护动物不受ASFV攻击。尽管如此,p72蛋白质仍然可以作为免疫抗原使用,其抗原性强健稳定[11]。

本试验根据ASFV-SY18(GenBank登录号:MH713612.1)的B646L基因序列,构建重组原核表达载体pCold-Ⅰ-p72,获得其编码的p72蛋白,通过免疫小鼠来制备多克隆抗体。

1.1 实验材料与动物参考NCBI中ASFV的ASFV-SY18(GenBank登录号:MH713612.1)毒株的B646L基因序列,并连入PUC57-simple载体中,由上海派森诺生物科技股份有限公司合成,两端插入EcoRⅠ和XhoⅠ酶切位点,经测序比对与B646L基因序列完全一致,命名为pUC57-ASFV-p72。EcoRⅠ和XhoⅠ限制性核酸内切酶购自NEB公司;
胶回收试剂盒购自南京诺唯赞生物科技股份有限公司;
凝胶回收试剂盒购自OMEGA公司;
PCR相关试剂、IPTG购自TaKaRa公司;
脱脂乳(Skim Milk)购自美国BD公司;
超敏发光液A液、B液购自普利莱(北京)生物技术公司;
His标签镍株和蛋白纯化柱购自QIAGEN公司;
弗氏不完全佐剂、弗氏完全佐剂、山羊抗小鼠IgG H&L(Alexa Fluor®488)、HRP标记的羊抗鼠IgG购自Sigma公司;
考马斯亮蓝(R-250)购自Biosharp公司;
蛋白酶抑制剂(PMSF)购自碧云天生物技术有限公司。BALB/C雌性小鼠,4周龄,购自上海杰思捷实验动物有限公司。

1.2 重组原核表达载体pCold-Ⅰ-p72的构建根据ASFVB646L基因序列和pCold-Ⅰ载体序列,利用双酶切同源重组设计引物,ASFV-p72-F:5"-atgg agctcggtaccctcgagTTAGGTACTGTAACGCAGCA CAGC-3",ASFV-p72-R:5"-caggtcgacaagcttgaattcA TGGCATCAGGAGGAGCTTTT-33",以合成的pUC57-ASFV-p72质粒为模板,PCR扩增ASFVB646L基因片段。分别将胶回收产物与pCold-Ⅰ原核表达载体用限制性内切酶EcoRⅠ和XhoⅠ进行双酶切,酶切条件:37℃恒温水浴孵育4 h;
65℃酶热失活20 min。胶回收酶切产物用同源重组酶37℃连接40 min,将连接产物转化至BL21感受态细胞后,于37℃条件下倒置培养12 h左右,根据转化结果筛选阳性克隆。通过PCR验证结果正确后,取部分样品送上海派森诺生物科技股份有限公司测序。将测序正确的重组原核质粒命名为pCold-Ⅰ-p72。

1.3 重组原核表达载体pCold-Ⅰ-p72的诱导表达将pCold-Ⅰ-p72和pCold-Ⅰ空载体转化到BL21感受态细胞后用玻璃棒均匀地涂布在含氨苄抗性的固体LB培养基平板上,于37℃细菌培养箱中倒置培养12 h左右,随机挑取单个菌落进行扩大培养,37℃条件下200 rpm过夜摇菌。取3只含5 mL左右氨苄抗性的LB培养基,再向其中分别加入上述过夜培养的菌液,放置于37℃恒温摇床中培养至OD值达到0.6~0.8后加入终浓度为0.1 mmol/L的IPTG,4 h后收样,对照组不加IPTG,保持与诱导组同样的培养条件。取适量诱导组和对照组的菌液,离心收集并处理菌体。通过SDS-PAGE电泳分析质粒pCold-Ⅰ-p72的诱导表达情况及重组蛋白rp72。

1.4 重组rp72蛋白的纯化通过切胶纯化法纯化重组蛋白rp72。按照1.5方法获得诱导组样品,随后进行SDS-PAGE凝胶电泳。电泳后,用4℃预冷的0.25 mol/L KCl溶液浸泡蛋白胶至出现银白条带,时间约为3 min,切下条带,用PBS清洗至银白色条带变得透明。研磨目的条带胶条,收集1.5 mL离心管中收集,加入适量PBS,使胶体颗粒完全溶解后放进-80℃冰箱冻溶3次,解冻后均需充分振荡。高速离心后,吸取上清液至新的1.5 mL离心管中,取少量样品进行SDS-PAGE电泳分析。

1.5 免疫小鼠准备一组4周龄的BALB/c雌性小鼠6只。用纯化的rp72蛋白免疫小鼠。免疫之前,测定纯化蛋白的浓度。1免:取纯化蛋白与等体积弗氏完全佐剂乳化后,每只小鼠100 μg蛋白量,腹部皮下注射;
2免:1免2周后每只小鼠取100 μg纯化蛋白与等体积弗氏不完全佐剂乳化,腹部皮下注射。3免:1免4周后。3免后第3 d通过眼球采血收集血清验证多克隆抗体的效果,检测效果达标后通过小鼠尾静脉注射纯化的rP72蛋白加强免疫。

1.6 多克隆抗体效价的测定利用间接ELISA方法测定多克隆抗体的效价。用0.05 mol/L的碳酸盐缓冲液稀释纯化的pCold-Ⅰ-p72蛋白包被,包被量200 ng/孔。用PBST(PBS中加0.5%Tween-20)稀释的5%脱脂乳作为封闭液进行封闭,200 μL/孔。一抗为眼球采血所得血清。将血清从1∶100~1∶100 000进行梯度稀释,阳性对照为空白小鼠血清,100 μL/孔加样。二抗用5%的脱脂乳按一定比例稀释,然后100 μL/孔加样。最后用酶标仪在OD450处读数,记录对照和样品的吸光度。

1.7 p72重组蛋白多克隆抗体效果检测

1.7.1 Western blot检测p72重组蛋白多克隆抗体效果 为验证多克隆抗体的特异性,用制备的重组蛋白多克隆抗体去检测纯化的 p72 重组蛋白和 pCold-I 空载体标签蛋白。煮样后,进行SDS-PAGE蛋白电泳,随后转印至NC膜上,5%脱脂乳封闭后,用采集的小鼠血清作为一抗,验证制备的多克隆抗体的效果。

1.7.2 间接免疫荧光实验检测p72重组蛋白多克隆抗体效果 用制备的p72重组蛋白多克隆抗体和空白阴性对照小鼠血清进行间接免疫荧光(immunofluorescence assay,IFA)实验,检测多克隆抗体的特异性。将构建的 pCAGGS-p72 真核表达质粒和 pCAGGS 空质粒分别转染到 293T 细胞,5% BSA封闭后,将采集的小鼠血清作为一抗,验证制备的多克隆抗体的效果。

2.1 重组原核表达载体pCold-Ⅰ-p72的鉴定ASFV

B646L基因PCR扩增结果可知,在1941 bp处有1条特异性条带,而阴性对照无特异性条带(图1)。用限制性内切酶EcoRⅠ和XhoⅠ对构建的重组原核质粒pCold-Ⅰ-p72进行双酶切,出现与预期大小一致的两条条带(图2),结合测序结果显示完全正确,确定成功构建了重组原核表达载体pCold-I-p72。

图1 ASFV B646L基因PCR扩增结果Fig.1 PCR amplification result of ASFV B646L gene

图2 重组质粒pCold-Ⅰ-p72酶切鉴定Fig.2 Digestion identification of recombinant plasmid pCold-Ⅰ-p72

2.2 重组原核表达载体pCold-Ⅰ-p72的诱导表达SDS-PAGE结果表明,IPTG诱导rP72蛋白表达后,显示rP72蛋白主要以融合蛋白形式在包涵体中表达,分子量约为72 kDa(图3),与预期大小一致。

图3 rp72蛋白诱导表达鉴定Fig.3 Expression identification of rp72 recombinant protein

2.3 重组蛋白的纯化纯化的重组蛋白rp72,经SDSPAGE电泳分析,出现较为单一的特异性条带,大小约72 kDa(图4)。

图4 重组蛋白rp72的纯化Fig.4 Purification of recombinant rp72 protein

2.4 Western blot分析重组蛋白的多克隆抗体为验证多克隆抗体的特异性,用制备的重组蛋白多克隆抗体去检测纯化的rp72蛋白与pCold-Ⅰ载体标签蛋白。结果显示,免疫后小鼠血清可识别纯化的rp72蛋白(图5)。

图5 重组蛋白rp72的Western blot检测Fig.5 Western blot detection of rp72 protein

2.5 间接免疫荧光实验检测重组蛋白的多克隆抗体通过间接免疫荧光(immunofluorescence assay, IFA)检测多克隆抗体的特异性。将构建的pCAGGS-p72真核表达质粒和pCAGGS空质粒分别转染到293T细胞。IFA检测结果显示,以重组P72蛋白为抗原制备的多克隆抗体能够特异性识别293T细胞中表达的p72蛋白,而转染空质粒的空白对照无任何反应(图6)。

图6 rp72重组蛋白的间接免疫荧光检测Fig.6 Indirect immunofluorescence assay analysis of rp72 protein with polyclonal antibodies

2.6 p72重组蛋白多克隆抗体效价的测定用纯化的pCold-I-p72 蛋白包被板子进行间接 ELISA 测定多克隆抗体的效价。经计算此研究制备的鼠抗ASFV p72蛋白多克隆抗体血清平均效价为1∶10 000。

非洲猪瘟是一种对养猪业危害严重的疫病,自从非洲猪瘟传入中国以来,该病在全国迅速扩散,给中国生猪产业造成了巨大经济损失[12]。目前还没有有效的控制非洲猪瘟的疫苗[13-14],该病目前的防控措施主要靠检疫[15],因此,建立快速、准确的实验室检测方法有助于ASF的及早发现与早期控制。

目前,在ASFV的血清学诊断中,具有诊断意义的主要蛋白有p72、p54、pp62和p30蛋白。p72蛋白是ASFV的主要结构蛋白,免疫原性好,保守性强[16]。p72蛋白是在病毒感染后半阶段产生的,约占病毒粒子蛋白的32%,同时也是病毒粒子二十面体线轴的重要部分[17]。p72蛋白能够抑制病毒与细胞结合。研究结果表明,不同地区由ASFV毒株诱导的p72抗体的相应抗原表位均相当保守[18]。

本研究通过构建ASFV的B646L基因的原核表达质粒,通过IPTG诱导表达其编码的p72蛋白。将得到的p72蛋白纯化后,作为抗原免疫BALB/c小鼠,制备p72蛋白的多克隆抗体,经实验室技术分析,制备的单克隆抗体具有较好的反应性和特异性,为建立快速、特异的血清学诊断技术奠定基础。

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